How are listeria and toxoplasma diagnosed in cerebrospinal fluid (CSF)?

Diagnóstico de Listeria y Toxoplasma en Líquido Cefalorraquídeo

El diagnóstico de Listeria monocytogenes y Toxoplasma gondii en líquido cefalorraquídeo (LCR) debe realizarse mediante cultivo y técnicas moleculares de PCR, siendo estas últimas especialmente importantes cuando hay tratamiento antibiótico previo o en pacientes inmunocomprometidos. 1

Diagnóstico de Listeria monocytogenes en LCR

Métodos diagnósticos principales:

• Tinción de Gram: Sensibilidad del 60-80% en pacientes sin tratamiento antibiótico previo y 40-60% en pacientes con tratamiento previo 1
• Cultivo bacteriano: Método de referencia, pero con rendimiento diagnóstico de solo 25-35% para Listeria 2
• PCR específica para Listeria: Mantiene sensibilidad incluso después del inicio de antibióticos 2, 3

Algoritmo diagnóstico para Listeria:

1. Obtener muestra de LCR (≥2 mL)
2. Realizar tinción de Gram inmediatamente
3. Cultivar en medios aerobios a temperatura ambiente por al menos 2 horas 1
4. Solicitar PCR específica para el gen hly de Listeria monocytogenes, especialmente en:
   • Pacientes con tratamiento antibiótico previo
   • Pacientes inmunocomprometidos
   • Ancianos
   • Casos con tinción de Gram y cultivo negativos 2, 3
5. Obtener hemocultivos (2-4 muestras) 1

Características del LCR en infección por Listeria:

• Menor incidencia de signos meníngeos comparado con otras meningitis bacterianas
• Menor probabilidad de tener recuento elevado de leucocitos
• Menor probabilidad de tener concentración elevada de proteínas 4
• Tinción de Gram negativa en dos tercios de los casos 4

Diagnóstico de Toxoplasma gondii en LCR

Métodos diagnósticos principales:

• PCR para Toxoplasma: Sensibilidad del 83.3% y especificidad del 95.7% para diagnóstico de encefalitis toxoplásmica en pacientes con SIDA 5
• Inoculación en ratón: Método tradicional pero menos sensible 6
• Detección de anticuerpos en LCR: Complementario a métodos moleculares 1

Algoritmo diagnóstico para Toxoplasma:

1. Obtener muestra de LCR
2. Realizar PCR específica para el gen B1 de Toxoplasma gondii 5, 7
3. Complementar con serología para anticuerpos IgG e IgM específicos en LCR y suero 1
4. En casos de sospecha de toxoplasmosis congénita:
   • Realizar PCR en LCR, orina, sangre y líquido amniótico
   • Considerar aislamiento del parásito mediante inoculación en ratón o cultivo celular 1

Consideraciones especiales:

• La detección de Toxoplasma en LCR es más difícil en encefalitis toxoplásmica por reactivación (11.5% de positividad) que en toxoplasmosis aguda primaria 6
• El diagnóstico presuntivo de toxoplasmosis del SNC se basa en síntomas clínicos, evidencia serológica de infección y presencia de lesiones ocupantes de espacio en estudios de imagen cerebral 1

Puntos clave y advertencias

• No refrigerar el LCR para análisis microbiológico 1
• Recolectar volúmenes adecuados de LCR (≥5 mL) para aumentar la sensibilidad diagnóstica 1
• Priorizar las pruebas en muestras de pequeño volumen 1
• No retrasar el tratamiento mientras se esperan resultados de laboratorio en casos de sospecha de meningitis bacteriana 1
• Considerar PCR para Listeria especialmente en pacientes que han recibido antibióticos previamente 2, 3
• Iniciar tratamiento empírico en pacientes con sospecha clínica de toxoplasmosis del SNC, ya que la sensibilidad diagnóstica no es suficiente (aproximadamente 50%) 7

La combinación de métodos diagnósticos aumenta significativamente la probabilidad de identificar correctamente estos patógenos en el LCR, especialmente en pacientes inmunocomprometidos donde estas infecciones son más frecuentes y potencialmente fatales.